Molekularne techniki analizy RNA
Prezentowane w publikacji techniki są obecnie stosowane w większości laboratoriów zajmujących się biologią molekularną, ale ciągle brak ich opisu w literaturze polskojęzycznej. Wykłady do fakultetu „Molekularne techniki analizy RNA” obejmują aktualny stan wiedzy na temat metabolizmu RNA u eukariontów oraz teorię technik pozwalających na badanie poziomu RNA w komórce, nowo syntetyzowanego transkryptu oraz badania oddziaływań białek uczestniczących w transkrypcji.
Na ćwiczeniach praktycznych studenci poznają wybrane techniki badania RNA na przykładzie organizmów modelowych: drożdży Saccharomyces cerevisiae oraz rzodkiewnika Arabidopsis thaliana.
Prezentacja metod jest ilustrowana odpowiednimi przykładami, w których studenci samodzielnie badają poszczególne rodzaje RNA, jak utajnione, niestabilne transkrypty CUT czy microRNA, i etapy ich metabolizmu. Skrypt ten zawiera zarówno wprowadzenie teoretyczne odwołujące się do najnowszych pozycji literaturowych, jak i opis wykonania poszczególnych eksperymentów.
Skrypt adresowany do osób zainteresowanych metabolizmem RNA oraz nowoczesnymi, molekularnymi technikami jego badania – studentów wszystkich kierunków Wydziału Biologii i Międzywydziałowych Indywidualnych Studiów Matematyczno-Przyrodniczych Uniwersytetu Warszawskiego.
- Kategorie:
- Język wydania: polski
- ISBN: 978-83-235-1755-9
- ISBN druku: 978-83-235-1232-5
- Liczba stron: 64
-
Sposób dostarczenia produktu elektronicznegoProdukty elektroniczne takie jak Ebooki czy Audiobooki są udostępniane online po opłaceniu zamówienia kartą lub przelewem na stronie Twoje konto > Biblioteka.Pliki można pobrać zazwyczaj w ciągu kilku-kilkunastu minut po uzyskaniu poprawnej autoryzacji płatności, choć w przypadku niektórych publikacji elektronicznych czas oczekiwania może być nieco dłuższy.Sprzedaż terytorialna towarów elektronicznych jest regulowana wyłącznie ograniczeniami terytorialnymi licencji konkretnych produktów.
-
Ważne informacje techniczneMinimalne wymagania sprzętowe:procesor: architektura x86 1GHz lub odpowiedniki w pozostałych architekturachPamięć operacyjna: 512MBMonitor i karta graficzna: zgodny ze standardem XGA, minimalna rozdzielczość 1024x768 16bitDysk twardy: dowolny obsługujący system operacyjny z minimalnie 100MB wolnego miejscaMysz lub inny manipulator + klawiaturaKarta sieciowa/modem: umożliwiająca dostęp do sieci Internet z prędkością 512kb/sMinimalne wymagania oprogramowania:System Operacyjny: System MS Windows 95 i wyżej, Linux z X.ORG, MacOS 9 lub wyżej, najnowsze systemy mobilne: Android, iPhone, SymbianOS, Windows MobilePrzeglądarka internetowa: Internet Explorer 7 lub wyżej, Opera 9 i wyżej, FireFox 2 i wyżej, Chrome 1.0 i wyżej, Safari 5Przeglądarka z obsługą ciasteczek i włączoną obsługą JavaScriptZalecany plugin Flash Player w wersji 10.0 lub wyżej.Informacja o formatach plików:
- PDF - format polecany do czytania na laptopach oraz komputerach stacjonarnych.
- EPUB - format pliku, który umożliwia czytanie książek elektronicznych na urządzeniach z mniejszymi ekranami (np. e-czytnik lub smartfon), dając możliwość dopasowania tekstu do wielkości urządzenia i preferencji użytkownika.
- MOBI - format zapisu firmy Mobipocket, który można pobrać na dowolne urządzenie elektroniczne (np.e-czytnik Kindle) z zainstalowanym programem (np. MobiPocket Reader) pozwalającym czytać pliki MOBI.
- Audiobooki w formacie MP3 - format pliku, przeznaczony do odsłuchu nagrań audio.
Rodzaje zabezpieczeń plików:- Watermark - (znak wodny) to zaszyfrowana informacja o użytkowniku, który zakupił produkt. Dzięki temu łatwo jest zidentyfikować użytkownika, który rozpowszechnił produkt w sposób niezgodny z prawem. Ten rodzaj zabezpieczenia jest zdecydowanie bardziej przyjazny dla użytkownika, ponieważ aby otworzyć książkę zabezpieczoną Watermarkiem nie jest potrzebne konto Adobe ID oraz autoryzacja urządzenia.
- Brak zabezpieczenia - część oferowanych w naszym sklepie plików nie posiada zabezpieczeń. Zazwyczaj tego typu pliki można pobierać ograniczoną ilość razy, określaną przez dostawcę publikacji elektronicznych. W przypadku zbyt dużej ilości pobrań plików na stronie WWW pojawia się stosowny komunikat.
Wstęp 7 1. Analiza northern – detekcja RNA na filtrach. Wykrywanie prekursorów rRNA u drożdży 9 Opis i cel doświadczenia 9 ĆWICZENIE 1. Izolacja całkowitego RNA z różnych organizmów oraz ocena jakościowa uzyskanego preparatu 10 Metody izolacji RNA 10 RNazy 10 Dobra praktyka laboratoryjna 11 Inhibitory RNaz 11 Przechowywanie RNA 12 Ocena jakości RNA 12 Izolacja całkowitego RNA z komórek drożdżowych 13 Literatura 14 ĆWICZENIE 2. Elektroforetyczny rozdział RNA w żelu agarozowym i ocena jakości RNA 15 Technika northern 15 Znakowanie izotopowe 15 Znakowanie nieizotopowe 15 Detekcja znaczników nieradioaktywnych 16 Elektroforeza RNA z drożdży w żelu agarozowym w warunkach denaturujących 16 Transfer kapilarny 17 ĆWICZENIE 3. Wykrywanie prekursorów rRNA u drożdży – hybrydyzacja 18 Skład buforów 18 Procedura hybrydyzacji 18 Odpłukanie nadmiaru sond 18 Wizualizacja hybrydyzacji 18 Literatura 18 2. Analiza northern – wykrywanie transkryptów CUT u drożdży 20 Wstęp 20 Co to są CUTy? 20 Funkcje CUTów 21 Literatura 21 ĆWICZENIE 4. Elektroforeza RNA w denaturującym żelu poliakrylamidowym 23 Elektroforeza RNA w 6% żelu poliakrylamidowym z 7 M mocznikiem 23 Transfer elektryczny mokry 23 ĆWICZENIE 5. Hybrydyzacja RNA na membranie z sondą radioaktywną specyficzną wobec IGS1-R, wyznakowaną metodą „random-priming” 24 3. Wykrywanie małych RNA 25 Wstęp 25 Małe interferujące RNA: miRNA i siRNA 25 Wybrane metody detekcji małych RNA (iRNA) 26 Literatura 28 ĆWICZENIE 4. Pulsacyjny RT-PCR, cz. 1 – pulsacyjna odwrotna transkrypcja 29 Materiały 29 Trawienie DNazą 29 Pulsacyjna odwrotna transkrypcja 29 ĆWICZENIE 5. Reakcja PCR – cz. 2 31 ĆWICZENIE 6. Rozdział w żelu agarozowym produktów pulsacyjnego RT-PCR 32 Przygotowanie próbek 32 4. Badanie końców cząsteczek RNA na przykładzie drożdżowych prekursorów snoRNA. Technika cRT-PCR 33 Wstęp 33 RNaza H 33 Ligacja RNA 34 Literatura 34 ĆWICZENIE 6. Trawienie RNazą H i ligacja RNA 35 Trawienie RNazą H 35 Ligacja RNA 36 ĆWICZENIE 7. Reakcja odwrotnej transkrypcji i PCR 37 Reakcja odwrotnej transkrypcji 37 PCR 37 ĆWICZENIE 8. Elektroforeza produktów PCR 38 5. PCR ilościowy: RT-qPCR 39 Wstęp 39 Formaty detekcji produktów qPCR 39 Kontrola jakości RNA 40 Analiza doświadczeń qPCR 40 Najbardziej kluczowe elementy RT-qPCR 41 Literatura 42 ĆWICZENIE 8. Projektowanie starterów do qPCR – konkurs na najlepszą parę starterów 43 Wskazówki do projektowania starterów 43 Wykonanie ćwiczenia 44 ĆWICZENIE 9. Testowanie zaprojektowanych starterów do qPCR 45 Przygotowanie starterów 45 Przygotowanie reakcji qPCR 45 ĆWICZENIE 10. Analiza reakcji qPCR 46 6. Oznaczenia aktywności enzymów biorących udział w obróbce RNA 47 Oznaczanie aktywności enzymów hydrolizy kapu 47 Struktura kapu transkryptów polimerazy RNA II 47 Hydroliza kapu 48 Badanie enzymatycznej hydrolizy kapu 49 Oznaczanie aktywności endonukleazy Rnt1 50 Endonukleazy z rodziny RNazy III 50 Rnt1 51 Biogeneza sn/snoRNA u drożdży Saccharomyces cerevisiae, rola Rnt1 52 Literatura 53 ĆWICZENIE 11. Analiza aktywności Rnt1 w ekstrakcie drożdżowym 55 Protokół 55 7. Analiza oddziaływania białka z kwasem nukleinowym: test opóźnienia migracji w żelu (EMSA) 58 Wstęp 58 Analiza EMSA 58 Terminacja transkrypcji polimerazy RNA I 59 Literatura 60 ĆWICZENIE 12. Wiązanie Reb1 do IGS1 rDNA in vitro 61 Badane warianty IGS1 rDNA S. cerevisiae 61 Wiązanie białka do DNA 61 Rozdział w natywnym żelu poliakrylamidowym 61 8. Sztuczne microRNA – amiRNA 63 Wstęp 63 Wybrane zalety amiRNA 64 Wady amiRNA 64 Literatura 64 ĆWICZENIE 13. Projektowanie amiRNA 64